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南京金益柏生物科技有限公司


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透射電鏡檢測(cè)

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品       牌

廠商性質(zhì)經(jīng)銷商

所  在  地南京市

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更新時(shí)間:2017-07-14 11:45:42瀏覽次數(shù):1234次

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產(chǎn)品簡(jiǎn)介

透射電子顯微鏡(Transmission Electron Microscope,TEM)是使用Z為廣泛的一類電鏡。通過發(fā)射電子束從而穿過超薄的樣品,同時(shí)與樣本相互作用,既而形成圖像。透射電鏡具有分辨率高和放大倍數(shù)高的優(yōu)點(diǎn)。其分辨率為0.1~0.2nm,放大倍數(shù)為幾萬到幾十萬倍。目前透射電鏡已經(jīng)廣泛的應(yīng)用到癌癥研究,病毒學(xué)研究,微生物學(xué),細(xì)胞學(xué)研究等生物領(lǐng)域。

詳細(xì)介紹

一、服務(wù)介紹
         透射電子顯微鏡(Transmission Electron Microscope,TEM)是使用的一類電鏡。通過發(fā)射電子束從而穿過超薄的樣品,同時(shí)與樣本相互作用,既而形成圖像。透射電鏡具有分辨率高和放大倍數(shù)高的優(yōu)點(diǎn)。其分辨率為0.10.2nm,放大倍數(shù)為幾萬到幾十萬倍。目前透射電鏡已經(jīng)廣泛的應(yīng)用到癌癥研究,病毒學(xué)研究,微生物學(xué),細(xì)胞學(xué)研究等生物領(lǐng)域。

二、實(shí)驗(yàn)原理
透射電鏡是以電子束透過樣品經(jīng)過聚焦與放大后所產(chǎn)生的物像,投射到熒光屏上或照相底片上進(jìn)行觀察。電子與樣品中的原子碰撞而改變方向,從而產(chǎn)生立體角散射。散射角的大小與樣品的密度、厚度相關(guān),因此可以形成明暗不同的影像。由于電子易散射或被物體吸收,故穿透力低,必須制備超薄切片(通常為50100 nm)。要在機(jī)體死亡后的數(shù)分鐘內(nèi)取材,組織塊要小(1mm3以內(nèi)),常用戊二醛和鋨酸雙重固定,包埋介質(zhì)包埋,用超薄切片機(jī)切成薄片,再經(jīng)醋酸鈾和檸檬酸鉛等進(jìn)行電子染色。

三、實(shí)驗(yàn)流程

1.取材

2.固定

3.脫水

4.包埋

5.固化

6.超薄切片機(jī)切片(50-60 nm)

7.3%醋酸鈾-枸櫞酸鉛雙染色

8.透射電鏡觀察,拍片

四、客戶提供

組織塊、細(xì)胞等

五、公司提供

基本實(shí)驗(yàn)步驟、藥品、樣品處理、圖片及圖片分析

實(shí)驗(yàn)周期2-3

六、透射電鏡取材注意事項(xiàng)

 

 

取材是電鏡樣品制備的*步,也是十分重要的一步。其操作成功與否直接關(guān)系到整個(gè)實(shí)驗(yàn)的成敗。 為了得到好的結(jié)果,請(qǐng)務(wù)必認(rèn)真做好zui關(guān)鍵的*步取材。因取材不規(guī)范導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)失敗本公司概不負(fù)責(zé)!取材基本要點(diǎn):快(1min)、冷(4 ℃)、?。?mm 3 )、凈(無雜質(zhì))、準(zhǔn)(部位準(zhǔn)確)

動(dòng)植物 組織取材流程及要求:

取材流程: 動(dòng)物麻醉后,快速取出需要檢測(cè)的組織,將組織切成 1 mm 3 左右小塊,固定于 2.5%戊二醛固定液 4℃過夜后快遞。植物組織除麻醉外,其他操作相同。
取材要求:
1.定位準(zhǔn)確:解剖水平的準(zhǔn)確定位誤差應(yīng)≤1mm。注意各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物取材區(qū)位及方位的*性和代表性。
2.操作迅速:組織離開活體后,以zui快的速度浸入戊二醛固定液,0.5 min 或zui多2 min。事先準(zhǔn)備好 l 1.5ml  尖頭 P EP  管里面盛滿預(yù)冷的戊二醛固定液。
3.標(biāo)本尺寸大?。航M織塊大小需要在 1 mm 3 左右,樣品太大會(huì)導(dǎo)致樣品固定不充分。(提示:把較大標(biāo)本塊修整成符合要求的顆粒時(shí),須事先準(zhǔn)備一個(gè)蠟盤,滴入戊二醛固定液,把標(biāo)本浸在液滴中修整,確認(rèn)每個(gè)小標(biāo)本顆粒都包含需要的結(jié)構(gòu)內(nèi)容,用牙簽挑出 3~5 粒標(biāo)本,放入 l 1.5ml  尖頭 P EP  管。)

4.保持低溫環(huán)境:為降低自溶酶活性,在 4℃低溫條件下取材,容器和器械預(yù)冷;將修整好的標(biāo)本塊放入戊二醛固定液后,普通 4℃冰箱保存。細(xì)胞取材流程及要求

取材流程: 細(xì)胞直接刮下,細(xì)胞懸液離心,棄上清,PBS 清洗 2 次,離心成團(tuán),加入 2.5%戊二醛固定液 4℃過夜后快遞。懸浮細(xì)胞、菌液可直接視為細(xì)胞懸浮液操作。

固體培養(yǎng)基培養(yǎng)的菌可直接將菌落挑到 PBS 中,后續(xù)操作*。
取材要求:
1.確認(rèn)細(xì)胞數(shù)量充足(6cm 或 10cm 皿長(zhǎng)滿),離心后在 ep 管中 綠豆大??;
2.新鮮配置的電鏡 2.5%戊二醛固定液,PH 值 7.3-7.4;
3.貼壁細(xì)胞用柔軟細(xì)胞劃子輕輕刮起成細(xì)胞懸液,盡量不要反復(fù)來回刮;
4.把細(xì)胞懸液置入潔凈 l 1.5ml  尖頭 P EP  管;
5.選擇合適的離心速度和時(shí)間離心,一般 1000rpm 至 3000rpm,5min 至 10min(轉(zhuǎn)
速及洗的時(shí)間請(qǐng)根據(jù)具體情況具體分析,比較脆弱敏感的細(xì)胞,盡量低轉(zhuǎn)速、短時(shí)間,
以細(xì)胞離心成團(tuán)為準(zhǔn)!S PBS  洗的時(shí)間過長(zhǎng),容易造成自噬假陽性);
6.取細(xì)胞團(tuán)塊,如致密團(tuán)結(jié)即棄上清,注入新鮮 2.5%戊二醛固定液,4℃保存;
提示:
a.取離心好的細(xì)胞團(tuán)塊時(shí),如細(xì)胞分散,可在離心管中注入約 5ul 血清后再次離心,至 EP 管底部出現(xiàn)致密細(xì)胞團(tuán)塊,即送電鏡室。
b.細(xì)胞大小不同,*離心富集速率和時(shí)間不同。提前檢索文獻(xiàn),避免反復(fù)離心損傷細(xì)胞。
需要客戶提供的材料 :
1、按照標(biāo)準(zhǔn)方法取材固定的實(shí)驗(yàn)樣本(固定在戊二醛固定液中的樣品)。
2、透射電鏡實(shí)驗(yàn)登記表,電子版發(fā)送到 biofcen。
樣本儲(chǔ)存運(yùn)輸標(biāo)準(zhǔn):
1、儲(chǔ)存:樣本取材后,4℃保存時(shí)間不超過 1 個(gè)月。
2、運(yùn)輸:泡沫盒+冰袋的方式運(yùn)輸, 樣品用氣泡膜包裹,避免標(biāo)本瓶直接接觸冰塊,固定液充滿 EP 管, 封口膜封口,以免郵寄途中液體滲出。
附表一:固定液配方(本公司有售)
A、 磷酸緩沖液的配方:
a 液:0.2M *貯備液:
Na2HPO4·2H2O
或:Na2HPO4·7H2O
或:Na2HPO4·12H2O
加雙蒸水至
b 液:0.2M *貯備液:
17.81 克
26.83 克
35.82 克
500 毫升
NaH2PO4·H2O 13.8 克
或:NaH2PO4·2H2O 15.61 克
加雙蒸水至 500 毫升
使用時(shí)將 A 液 40.5ml 和 B 液 9.5ml 混合成 0.2 磷酸緩沖液。(PH7.4)
B、 2.5﹪戊二醛固定液的配方:
0.2M 磷酸緩沖液 50ml
25﹪戊二醛溶液 (電鏡) 10ml
加雙蒸水至 100ml
戊二醛溶液zui終濃度:pH 值 7.3-7.4


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