PCR技術已經(jīng)在生物學研究和臨床醫(yī)學檢驗領域中得到了廣泛的應用，PCR技術也日臻完善。PCR技術操作簡便，特異性強，敏感度*，正因為敏感度高，很容易受其他因素的影響，因此要得到準確可靠的反應結果，需根據(jù)不同的模板，摸索的條件，配制出PCR反應試劑。
聚合酶鏈反應必須具備下述基本條件：①模板核酸（DNA或RNA），②人工合成的寡核苷酸引物，③合適的緩沖體系，④鎂離子，⑤三磷酸脫氧核苷酸，⑥耐熱dna聚合酶，RNA反轉錄酶及RNA酶抑制劑（RNasin）,⑦溫度循環(huán)參數(shù)（變性、復性和延伸的溫度與時間及循環(huán)次數(shù)）。

1．模板的選擇

PCR反應用DNA（單、雙鏈DNA）或RNA都可以作模板進行核酸的體外擴增。若起始材料是RNA，須先通過逆轉錄得到cDNA后才能進行正常pcr擴增。核酸標本來源廣泛，可以從純培養(yǎng)的細胞或微生物中直接提取，也可以從臨床標本（血、尿、便、痰、體腔積液、漱口水等）、犯罪現(xiàn)場標本（血斑、精斑、毛發(fā)等）、病理標本（新鮮或固定石蠟包埋標本）以及木乃伊標本中提取。無論標本來源如何，待擴增核酸都需部分純化，以使核酸樣品中不混有任何蛋白酶、核酸酶、Taq DNA聚合酶抑制劑以及能結合DNA的蛋白質。雖然PCR可以僅用微量樣品（甚至是來自單一細胞的DNA），但為保證反應的特異性，一般還宜用納克級（ng）的克隆DNA、微克水平的染色體DNA或102-105拷貝的待擴增DNA片段做起始材料。

2．引物

PCR擴增產(chǎn)物的大小及擴增的靶序列在基因組中的位置是由引物限定的。因此，引物的選擇與合成對PCR成功與否具有決定性意義。對某一dna片段來說，由于同源順序的存在，隨意設計的兩條引物鏈，其PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳分析時可能會出現(xiàn)多條電泳帶。因此，在引物的設計過程中要考慮引物鏈的特異性，即它們只與被檢測的DNA片斷互補。

(1) 引物長度以16-30個堿基為宜，zui20-24個bp，不會形成穩(wěn)定的復合體。

(2) 有時引物不起作用，理由不明，可以移動序列位置來解決。

(3) （G+C）%含量一般40%-60%為佳，兩個引物中（G+C）%含量應盡量相似。

(4) 兩個引物之間不應發(fā)生互補，特別是在引物3’端避免形成“引物二聚體”。如無法避免，其3’端互補不應大于2個堿基。應盡量避免數(shù)個嘌呤或嘧啶的連續(xù)排列，避免同源序列（尤其6個以上相同）。

(5) 引物內部避免形成次級結構，尤其是發(fā)卡結構，必要時應通過計算機進行結構分析。

(6) 引物濃度不宜偏高，濃度過高有兩個弊端，一是易形成引物二聚體，二是當擴增微量靶目標并且起始材料又不太純時容易產(chǎn)生非特異性產(chǎn)物。一般來說，用低濃度引物不僅經(jīng)濟，反應特異性也較好。

3．鎂離子濃度

Mg2+濃度對PCR擴增反應的特異性和產(chǎn)量有著顯著影響。PCR中常用的體系應Mg2+濃度為1.5mmol/L，但對不同的反應體系應優(yōu)化Mg2+濃度。濃度過高，使反應特異性降低；濃度過低，使產(chǎn)物產(chǎn)量減少。PCR反應中Mg2+的加入量要比dNTP濃度高0.5-2.5mmol/L。對每種PCR反應體系Mg2+量的優(yōu)化。另外，還需注意引物和模板DNA原液中是否含EDTA等螯合劑影響游離Mg2+的濃度。